جداسازی مایکوپلاسماهای بیماریزا از مزارع پرورش شترمرغ در ایران

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسنده

.

چکیده

در شتر مرغ­ها، مایکوپلاسماها غالباً با بروز بیماری‌های تنفسی همراه بوده و موجب بروز رینوتراکئیت، التهاب کیسه‌های هوایی، و التهاب سیستم تنفسی فوقانی می­شوند. هدف از مطالعه حاضر جداسازی و ارزیابی مایکوپلاسماهای بیماریزای شترمرغ در ایران می­باشد. در این مطالعه تعداد 100 نمونه از ریه­ها، نای، و کیسه‌های هوایی شترمرغ­های دارای علائم بالینی بیماری تنفسی، در زمان کشتار اخذ گردید. نمونه­ها با استفاده از آزمایش سریع، کشت میکروبی و آزمایش مولکولی مورد ارزیابی قرار گرفتند. 05/21% نمونه­ها در آزمایش واکنش زنجیره پلیمراز مثبت بوده­اند که به ترتیب 89/7% و 14% آنها به ترتیب مایکوپلاسما گالی­سپتیکوم و مایکوپلاسما سینوویه بوده­اند. در بررسی کشت باکتریایی، 14/6% نمونه­ها از نظر مایکوپلاسما گالی­سپتیکوم  و 01/7% نمونه­ها از نظر مایکوپلاسما سینوویه مثبت بودند. همچنین براساس ارزیابی بالینی بیشترین میزان موارد مثبت کشت به ترتیب مربوط به ریه، کیسه­های هوایی و نای بود. با توجه به شیوع مایکوپلاسماهای ماکیان در شترمرغ­ها، بررسی دقیق بیماریزایی آن­ها در شترمرغ ضروری می­باشد، تا اهمیت پیشگیری مشخص شود

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Isolation of pathogenic mycoplasmas from Iranian ostrich farms

نویسنده [English]

  • Moomivand, H., Pourbakhsh, S.A., Jamshidian, M. .
چکیده [English]

In ostriches, mycoplasmas are generally, related with respiratory diseases and causes rhino-tracheitis, airsacculitis and inflammation of the upper respiratory tract. The aim of current study was to isolation of pathogenic mycoplasmas in ostrich farms of Iran using PCR and culture methods. Materials and Methods: In this study, 100 samples were taken from lung, trachea and air sacs of ostriches with respiratory disease at slaughter time. Samples was evaluated by culture, rapid serum test and PCR. Results and conclusions: The PCR tests results indicated 21.05% of samples was positive, which 7.89% and 14% was M. gallisepticum and M. synoviae, respectively. In culture method, 6.14% of samples was positive in view of M. gallisepticum and 7.01% of M. synoviae. Also according to clinical evaluation highest rate of positive cases was in lungs, air sacs, and trachea, respectively. According to prevalence of poultry mycoplasmas in ostriches, it is essential to exact evaluation of their pathogenesis in ostriches, to determine the importance of prevention.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Mycoplasma
  • Ostriches
  • Culture
  • PCR
  • Pathogenesis
nkari, A.R.S., Bradbury, J.M. (1996): Mycoplasma iowae: A review. Avian Pathol. 25(2): 205-229.

2.  Azizpour, A., Bozorgmehri Fard, M.H. (2011): A comparative survey on performance of m gallisepticum-free and m gallisepticum-infected layer flocks in tabriz area of iran. J Appl Anim Res. 39(4): 295-297.

3.  Bagheri, H., Doosti, A., Arshi, A. (2011): Detection of mycoplasma gallisepticum in chaharmahal va bakhtiari province poultry using pcr. Global Vet. 7(1): 54-59.

4.  Blackall, P.J., Christensen, H., Beckenham, T., Blackall, L.L., Bisgaard, M. (2005): Reclassification of pasteurella gallinarum,[haemophilus] paragallinarum, pasteurella avium and pasteurella volantium as avibacterium gallinarum gen. Nov., comb. Nov., avibacterium paragallinarum comb. Nov., avibacterium avium comb. Nov. And avibacterium volantium comb. Nov. Int J Syst Evol Microbiol. 55(1): 353-362.

5.  Botes, A., Peyrot, B., Olivier, A., Burger, W., Bellstedt, D. (2005): Identification of three novel mycoplasma species from ostriches in south africa. Vet Microbiol. 111(3): 159-169.

6.  Cadman, H.F., Kelly, P.J., Zhou, R., Davelaar, F., Mason, P.R. (1994): A serosurvey using enzyme-linked immunosorbent assay for antibodies against poultry pathogens in ostriches (struthio camelus) from zimbabwe. Avian Dis. 38(3): 621-625.

7.  Cline, J. L.,, Turner, K.S., O’connor, R.J., Gomez, J., L. B.,, Kleven, S.H. (1997): Determination of colonisation of mycoplasma gallisepticum and mycoplasma synoviae in ostriches. Am. Ostrich, Special Annu. Res. 12-13.

8.  Elhamnia, F., Banani, M., Shokri, G., Pourbakhsh, S., Ashtari, A. (2016): Detection of mycoplasma synoviae infection in broiler breeder farms of tehran province using pcr and culture methods. Arch. Razi Ins. 65(2): 75-81.

9.  Ferguson-Noel, N. (2013): Mycoplasmosis. In: Diseases of poultry,  edition (ed.  Swayne, D.E., Glisson, J.R., Mcdougald, L.R., Nolan, L.K., Suarez, D.L., Nair, V.). John Wiley & Sons: Iowa, USA; 875-941.

10.  Ghaleh Golab Behbahan, N., Asasi, A., Afsharifar, A., Pourbakhsh, S. (2005): Isolation and detection of mycoplasma gallisepticum by polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism. Iran J Vet Res. 6(1): 35-41.

11.  Kleven, S.H. (2008): Control of avian mycoplasma infections in commercial poultry. Avian Dis. 52(3): 367-374.

12.  Lauerman, L.H., Hoerr, F.J., Sharpton, A.R., Shah, S.M., Van Santen, V.L. (1993): Development and application of a polymerase chain reaction assay for mycoplasma synoviae. Avian Dis. 37(3): 829-834.

13.  Mirhosseiny, S.H., Kheirkhah, B., Hassanshahian, M. (2014): Isolation of infected mycoplasma. Synoviae from the ostrich’s lungs in kerman province. New Cellularand Molecular Biotechnology Journal. 4(14): 109-114.

14.  Moalic, P.-Y., Gesbert, F., Laigret, F., Kempf, I. (1997): Evaluation of polymerase chain reaction for detection of mycoplasma meleagridis infection in turkeys. Vet Microbiol. 58(2): 187-193.

15.  Nascimento, E., Pereira, V., Nascimento, M., Barreto, M. (2005): Avian mycoplasmosis update. Rev. Bras. Cienc. Avic. 71-9.

16.  Peccati, C., Grilli, G., Gallazzi, D., Rampin, T. (1996):Serological survey in ostriches in northern italy. Improving our Understanding of Ratites in a Farming Environment; 47.

17.  Peighambari, S., BozorgmehrifardÙ, M., Hosseini, H., Pourbakhsh, S., Razzazian, M. (2006): Random amplified polymorphic DNA (rapd) fingerprinting of mycoplasma gallisepticum isolates from chickens. Arch. Razi Ins. 61(2): 67.

18.  Shane, S.M. (1998): Infectious diseases and parasites of ratites. Vet Clin N Am-Food A. 14(3): 455-483, iv.

19.  Shivaprasad, H. (1993): Neonatal mortality in ostriches: An overview of possible causes. Annual Conference of the Association of Avian Veterinarians, Proceedings. 282-293.

20.  Simkiss, K. (1997): Embryo manipulation of the germplasm. Poult Sci. 76(8): 1093-1100.

21.  Smith, C. (1993): Ostrich chick survival presents challenge. J Am Vet Med Assoc. 203(5): 637-643.

22.  Swayne, D.E. (1998):  Laboratory manual for the isolation and identification of avian pathogens. American Association of Avian Pathologists, University of Pennsylvania. P: 74-80.

23.  Tebyanian, H., Mirhosseiny, S.H., Kheirkhah, B., Hassanshahian, M. (2014): Isolation and identification of mycoplasma synoviae from suspected ostriches by polymerase chain reaction, in kerman province, iran. Jundishapur J.Microbiol. 7(9): 1-5.

24.  Van Kuppeveld, F., Van Der Logt, J., Angulo, A., Van Zoest, M., Quint, W., Niesters, H., Galama, J., Melchers, W. (1992): Genus-and species-specific identification of mycoplasmas by 16s rrna amplification. Appl Environ Microbiol. 58(8): 2606-2615.

25.  Verwoerd, D. (2000): Ostrich diseases. Revue scientifique et technique (International Office of Epizootics). 19(2): 638-661.

26.  Wood, B., Wilson, S. (2013): Mycoplasma iowae in turkeys (meleagris gallopavo). World's Poultry Science Journal. 69(04): 909-916.